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外泌体的提取、分离方法：超高速离心法。常用的是超高速离心法，该方法是被誉为分离外泌体的“金标准”。该方法利用离心力从细胞培养液或生物流体获得外泌体，经过400×g、2000×g、10000×g的低速离心，除去细胞及大的细胞分泌物；较后超高速100000×g离心得到外泌体[12]。超高速离心因操作简单，不需要复杂的技术支持，并且成本相对较低而被普遍使用。但是该方法耗时、产率低，得到的外泌体的数量和质量很大程度上受转子的类型、转子沉降角度等因素影响，其中较主要的问题就是差速离心法获得的沉淀物是外泌体，但也会有其他的囊泡、蛋白质或蛋白和RNA的聚集体。超速离心法是目前外泌体相关文章中的主流方法，由于离心步骤繁琐。无锡外泌体提取试剂供应商

外泌体（Exosome）是细胞主动分泌的囊泡样小体，大小均一，直径30-200nm，密度1.10-1.18g/ml，来源普遍，几乎所有细胞都可分泌，在血液，尿液，唾液，脑脊液，腹水，乳汁等体液中普遍分布。外泌体较早在1986年发现于培养的绵羊红细胞上清液中。1996年，研究者发现外泌体作为抗原呈递因子参与T细胞依赖的抗一些病症反应，开启了外泌体蛋白研究的新天地。2013年诺贝尔生物/医学奖解答了细胞如何组织其内部较重要的运输系统之一——囊泡传输系统的奥秘。上海外泌体提取试剂进货价外泌体提取：高速离心以消除更大的囊泡。

外泌体项目获批学科方向：从统计来看，与前年相似外泌体立项集中的领域还是一些病症学，近年来外泌体发表的文章也绝大部分与其在一些病症的形成，耐药性，检测等方面有关。例如2019年发表在MolecularCancer（IF=10.679）上的文章表明外泌体FMR1-AS1通过TLR7/NFκB/c-My信号通路在女性食管ai中促进维持ai症干细胞样细胞的动态平衡。发表在JournalofExperimental&ClinicalCancerResearch（IF=5.646）上的一篇文章发现外泌体转运p-STAT3可促进结直肠ai细胞获得性5-FU耐药性。发表在Cancers(IF=6.162)上的一篇文章则研究了腹腔灌洗液中细胞外囊泡相关的miRNA作为子宫内膜ai分子标志物的可能性。此外，在神经系统和精神疾病，中医学及其他领域也有不少外泌体相关项目中标。

外泌体的提取方法：1.超速离心法（差速离心）。超离法是较常用的外泌体纯化手段，采用低速离心、高速离心交替进行，可分离到大小相近的囊泡颗粒。超离法因操作简单，获得的囊泡数量较多而广受欢迎，但过程比较费时，且回收率不稳定（可能与转子类型有关），纯度也受到质疑；此外，重复离心操作还有可能对囊泡造成损害，从而降低其质量。2.密度梯度离心。在超速离心力作用下，使蔗糖溶液形成从低到高连续分布的密度阶层，是一种区带分离法。通过密度梯度离心，样品中的外泌体将在1.13-1.19g/ml的密度范围富集。此法获得的外泌体纯度较高，但步骤繁琐，耗时，对离心时间极为敏感外泌体提取：基于聚合物的沉淀技术。

外泌体（exosomes）是活细胞经过"内吞-融合-外排"等一系列调控过程而形成的膜性囊泡，来源于晚期核内体(也称为多囊泡体)，直径约为30-150nm，密度在1.13-1.21g/ml，天然存在于血液、唾液、尿液及母乳等体液中，同时外泌体也存在于组织和细胞间隙中。人体中几乎所有类型的细胞均能产生外泌体，人体中大约有1014个外泌体，大约平均每个细胞产生1000-10000个。外泌体中含有核酸（DNA、miRNA、lncRNA、mRNA、tRF等）、蛋白和脂类，在细胞间物质和信息转导中发挥重要作用，研究表明其在干细胞、免疫调控、瘤转移、血管生成以及生物标志物等领域都发挥着不可替代的作用由于国内有关外泌体提取试剂的缺乏，我国对外泌体的研究还基本依赖于过程繁琐的超速离心和进口提取试剂盒。南京外泌体提取试剂销售厂家

外泌体的提取方法，先用含无外泌体血清的培养基对人脂肪来源间充质干细胞进行饥饿培养。无锡外泌体提取试剂供应商

外泌体的提取、分离方法：尺寸排阻色谱法和超滤法；尺寸排阻色谱法是利用分子筛理论，较初是根据蛋白质分子大小分离蛋白质的色谱技术。该方法的主要优点是不需要很大的离心力，从而保证了外泌体的完整性。Mol等[13]对比超高速离心和尺寸排阻色谱法得到的外泌体蛋白，结果显示，后者得到的外泌体的蛋白丰度高于前者。这些基于过滤或尺寸排阻色谱的新方法为外泌体大规模的生产和临床应用提供了可能。超滤也是根据外泌体的尺寸将其分离出来的一种方法，超滤一般被认为是外泌体分离过程中的一个准备过程，通过超滤除去大分子和小分子的蛋白质。不过连续的超滤可以分离出外泌体，和超高速离心相比，超滤不需要特殊的设备就可以较短时间内分离出外泌体。但是，超滤膜对外泌体的黏附作用会降低外泌体的产量，并且超滤过程中施加的外力可能会使外泌体变形或者破裂。无锡外泌体提取试剂供应商